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March 20, 2025
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진공 튜브는베르누일리 원리그리고압력 경사혈액을 채취합니다.음압혈관 압력 (515 mmHg) 을 극복하는 혈관 압력 (일반적으로 20~30 kPa).Q다음하겐-포세유 방정식:
Q=8ηLπΔPr4- 네
어디?ΔP= 압력 경사,r= 바늘 반지름η= 혈중 고체성 (~3~4mPa·s), 그리고L= 바늘 길이
중요 한 통찰력: 더 작은 바늘 가이드 (예를 들어, 21G 대 23G) 는r혈류율을 낮추지만 혈전 위험을 최소화합니다.
유리: 화학적으로 무활성, 미량 원소 테스트에 이상적입니다.
플라스틱 (PET): 찢어지지 않는, 가벼운, 그러나 세포 접착을 줄이기 위해 실리콘 코팅이 필요할 수 있습니다.
폴리머 젤 (예를 들어 폴리에스터 기반) 은밀도1,04 ∼1,08 g/cm3, 혈청 (1,02 g/cm3) 과 세포 (1,08 ∼1,10 g/cm3) 사이의 중간 물질이다. 원심화 (1,200 ∼2,000 RCF) 도중에 젤이 이동하여 장벽을 형성한다.세포 대사 작용이 분석 물질을 변화시키는 것을 방지합니다..
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첨가물 | 메커니즘 | 예제 사용 |
---|---|---|
EDTA | 체라트 Ca2+ → 응고 계절을 억제합니다. | CBC (세포 형태 보존) |
나트륨 시트라트 | Ca2+를 결합 → 섬유성물질 → 섬유성물질 변환을 방지 | 응고 연구 (PT/APTT) |
헤파린 | 안티 트롬빈 III를 활성화 → 트롬빈을 억제합니다 | 플라즈마 전해질 (K+, Na+) |
기술 참고: EDTA의 스테키오메트릭 비율은 1.5~2.2 mg/mL 혈액입니다. 과다한 EDTA → 수축된 적혈구 (신경 혈전증) 를 유발합니다.
빨간 톱 튜브에 실리카 입자가 활성화헤이그맨 인수 (FXII)표면 부피 최적화 (~ 300 m2/g) 는 급속한 응고 형성을 보장합니다.
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튜브: IgG/IgM 검출을 위한 혈청 분리 튜브 (SST).
도전: ELISA에서 젤 간섭 → 초중심화 (10,000 RCF, 10 분) 를 사용하여 해결되었습니다.
데이터: 감수성이 85%에서 94%로 향상되었습니다 (J. 클린, 미생물학, 2023년)
액체 생검:
튜브: 세포 없는 DNA 튜브 (Streck) 와 독점적 인 고정제.
물리학: 뉴클레아스를 안정시킵니다켈레이터(EDTA) 및오스모스 조절기DNA 분해를 방지하기 위해서요.
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튜브 크기, 첨가물, 그리고 라벨을 규정합니다. 예를 들어:
용량 허용량: 10 ml 이하의 튜브에 ± 10%
혈소 분해 기준: 자유 헤모글로빈 <0.5g/L (540nm에서 분광 촬영)
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그림 1: 진공관 의 압력 과 혈관 수량
(여기에 21G 대 23G 바늘 성능을 비교하는 대화형 차트를 삽입)
그림 2: 센트리푸게이션 속도에 의한 젤 분리기 효율성
1,000 대 2,000 RCF에서 세포 없는 플라스마 양을 보여주는 바 차트)
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A: 유지이온 강도정확한 응혈 요인 측정을 위해. 미흡 채우는 희석 요인 → 거짓으로 연장된 PT/APTT.
A: PET 튜브에 있는 유연제 (예를 들어, 프탈레이트) 는 Zn2+를 침착시킬 수 있습니다 → 인증된 미량 원소 없는 튜브를 사용하십시오.
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혈전: 절단 스트레스 또는 오스모틱 불균형으로 인한 적혈구 파열.
추첨 순서: 교차 오염을 피하기 위한 순서 (예: EDTA 이전에 시트라트).
SST: 혈청 분리 튜브 (젤 장벽)
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문제: 높은 고도의 지역에서 변수 진공 손실 (예를 들어 안데스 산맥).
해결책: 강화 된 막대기를 가진 튜브 (CLSI H21-A5).
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CLSI H3-A6: 혈액 수집 절차.
임상 화학(2023): 질량 분광학에서 첨가 간섭.
WHO 지침: 4~25°C에서 튜브로 보관하고, 동결을 피합니다.
인터랙티브 요소 제안:
도구 팁 어휘: 정의를 보기 위해 ₹RCF$ 같은 용어 위에 이동 버튼을 누르십시오.
퀴즈: 튜브 첨가물에 대한 지식을 테스트하세요!
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